みなさん、こんにちは。
バイオコース２年生の生化学実習の実技試験の様子をご紹介します。
毎年、学生は、悩みに悩んで取り組んでいる実技試験です。
今年はどうでしょうか。
では早速、最初のグループからご覧ください。
最初に各自で実習計画を考えから実技試験が始まります。
スタートは好調のようです。
少し余裕があるようです。
実技試験途中から第２グループが始まります。少し緊張気味のようです。
第１グループは、各自それぞれ計画に沿って取り組んでいるようです。
第１グループは、まとめの時間に入りました。
第２グループも各自実技試験が始まりました。
奥の学生が何か頭を抱えているような・・・。
ガンバレ！！！
第１グループが終了し、入れ替わりで第３グループが始まります。
まずは、最初に実習計画から考えます。
第３グループも実技試験が始まりました。
２年生のみなさん、実技試験はいかがでしたか。
今年は、少し余裕があったかな？
ほぼ全員が、実習計画をたて、実技試験を行えたと思います。
卒業までしっかり技術を磨いていきましょう。
おつかれさまでした。
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みなさん、こんにちは。
今回のバイオコース２年生の生化学実習は、糖の定性を行いました。
それでは、糖の呈色反応をご覧ください。
今回使用した糖はキシロース、グルコース、フルクトース、ショ糖、マルトース、デンプンと比較の為の水です。
糖の性質を利用した定性試験になります。
まずは、準備のようすです。
それでは最初の糖の定性試験は、アントロン試験です。糖であれば青緑色に反応します。
水以外は反応します。
次はベネディクト試験です。還元糖であれば赤色の沈殿があります。
少し濁っているのがわかりますか。キシロース、グルコース、フルクトース、マルトースが反応します。
次はヨウ素デンプン反応です。もちろんデンプンと反応します。
次はバールフェズ試験です。単糖類であれば赤色の沈殿ができます。
キシロース、グルコース、フルクトースです。
次はセリワノフ試験です。ケトースが反応します。フルクトースです。
２つ反応が出ていますが、ショ糖にもフルクトースが含まれるので、擬陽性を示します。
色の濃さもポイントですね。
最後はビアル試験です。ペントース（五炭糖）が反応します。緑青色です。キシロースです。
ビアル試験は色の変化があるので、おもしろい反応です。黄色→緑色→青色に変化します。
ちょっと焦ってしまい、ぼけてしまいました。すみません。
結果発表です。
左から順に水、フルクトース、キシロース、ショ糖、デンプン、マルトース、グルコースになります。
みなさん、いかがでしたか。２年生は、無事に定性できました。
２年生のみなさん、糖の性質をしっかり理解しておきましょう。
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みなさん、こんにちは。
今回のバイオコース２年生の生化学実習は、ＳＤＳ－ＰＡＧＥ法を行いました。
ＳＤＳ－ＰＡＧＥ法は、ＳＤＳ－ポリアクリルアミドゲル電気泳動法のことです。
タンパク質の電気泳動法になります。
今回は、唾液アミラーゼの分子量を求めました。
それでは、電気泳動の様子をご覧ください。
分子量を求めるために、分子量マーカー（分子量のわかってタンパク質）を用いるのですが、今回の分子量マーカーは色つきにしてみましたので、電気泳動の様子をご覧ください。
今回使用した電気泳動装置です。
サンプルと分子量マーカーを塗布して、通電を行いました。
真ん中に色つきのバンドが見えていると思います。こちらが分子量マーカーです。
サンプルには、色がありませんので、見えません。
さらに時間が経つと、分子量マーカーが分離してきました。
分子量の大きさによって、分離が行われます。
さらに時間が経つと、さらに分離が大きくなります。
電気泳動終了後、染色をおこないました。
目的のタンパク質（アミラーゼ）は、分離されているのでしょうか。
脱色していないので、わかりずらいですが、分離はされているようです。
今回は、分子量マーカーを班ごとに変えてみましたので、こちらもご紹介します。
２色の分子量マーカーです。赤色と青色です。
こちらは１色の分子量マーカーです。（青色のみです。）
今回は脱色をしていないので、少しわかりづらいですが、全班、アミラーゼの確認ができ、分子量を求めることができました。
バイオコース２年生のみなさん、大切な電気泳動法なので、しっかりと原理を理解しておいてくださいね。
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みなさん、こんにちは。
今回のバイオコース２年生の生化学実習は、ゲルろ過クロマトグラフィーで、唾液アミラーゼの分子量測定を行いました。
それでは、実習の様子をご覧ください。
まずは、カラムにゲルを詰める作業からです。
上手い具合にカラムにゲル（白い粒子）が詰められました。
標準分子量マーカーとサンプルの混合液をゲルの上部にのせ、開始します。
すぐに、分離が始まります。上から黄色、茶色、青色に分離しているのがわかります。
さらに緩衝液を流していくと、青色が分離していきます。
さらに緩衝液を流していくと、茶色と黄色が分離していきます。
今回は、１ｍＬずつ分取するのですが、手作業で行いました。
しかも滴数によるサンプリングだったので、その様子をご覧ください。
少しでも安定してサンプリングするために、工夫をしたようです。
こちらは、ちょっと眠そうな眼になっていますが、眼差しは滴数を数えているようです。
こちらは、余裕十分のようです。
滴数の数えミスをなくすために、こんなものも登場しました。スマホのアプリだそうです。
いろんなアプリがあるんですね。
混合液の分離が終了後、分析作業に入ります。
今回は、唾液アミラーゼの分子量測定ですので、ヨウ素デンプン反応でアミラーゼの確認を行いました。
標準分子量マーカーは吸光度測定により、確認を行いました。
２つの結果をもとにまとめをしていきます。
２年生のみなさん、ゲルろ過クロマトグラフィーはいかがでしたか。
次回は電気泳動になります。頑張っていきましょう。
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みなさん、こんにちは。
今回のバイオコース２年生の生化学実習は、卵白アルブミンの定量を行いました。
この卵白アルブミンは、前回分離した卵白アルブミンです。
まずは、吸収曲線の作成をしました。
卵白アルブミンは、タンパク質なので、最大吸収波長は２８０ｎｍになります。
しっかり２８０ｎｍ付近に吸収が出ています。
次に卵白アルブミンの定量です。今回は、ビウレット法を用いました。アルブミン標準液の発色です。
各濃度によって、発色（紫色）具合が違います。一番左は、未反応です。
今回のサンプル（卵白アルブミン）の発色です。色の濃さの違いは、希釈倍率の違いです。
２年生ではお馴染みの検量線による定量です。
ＤＮＡの定量同様に、今回の卵白アルブミンの定量も無事に定量できました。
２年生のみなさん、一つの実験の流れとして、分離→定性・定量を忘れないようにしましょう。
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みなさん、こんにちは。
今回のバイオコース２年生の生化学実習では、卵白アルブミンの分離を行いました。
それでは、分離操作の様子をご紹介します。
まずは、卵白と卵黄に分けます。卵白をガーゼで濾します。
pH指示薬を加えます。若干緑色になっているのがわかりますか。
酸を加え、赤紫色に変化すると終了です。
写真では、わかりづらいですが、実際に学生もわかりづらかったようです。
学生に色の変化を伝えると、「えー！」と言ってました。
緑色っぽい色からの変化なので色判断は、なかなか難しかったようです。
今回の実習では、結構重要な操作なのですが・・・・・。
遠心をして、上清を回収します。
塩を加え、遠心をして、卵白に含まれるグロブリンを除去します。
上清にさらに塩を加えるとアルブミンが析出してきます。
塩濃度によって、グロブリンとアルブミンがそれぞれ析出してきます。
沈殿（アルブミン）を水に溶解して、透析を行いました。
透析後、今回分離したアルブミンの定量を行います。
タンパク質の性質がわかりやすい実習だと思いますので、２年生のみなさん、しっかり理解してくださいね。
次回は、アルブミンの定量の様子をご紹介します。
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みなさん、こんにちは。
今回の生化学実習は、ＤＮＡの定量を行いました。
今回定量したＤＮＡは、第１回目の生化学実習のときにブタの肝臓から分離したＤＮＡです。
それでは、実習の様子をご覧ください。
こちらは、吸収曲線です。ＤＮＡは、２６０ｎｍ付近に最大吸収波長があります。
今回分離したＤＮＡも最大吸収波長が２６０ｎｍ付近にあることが確認できました。
ＤＮＡの確認ができたところで、余裕のポーズかな？
さらに今回は定量ですので、ジフェニルアミン法で定量を行いました。
今回も無事に実習は終了。
この実習で１期の生化学実習は終了です。
２期からも生化学実習はありますので、２年生のみなさん、しっかり頑張っていきましょう。
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みなさん、こんにちは。
２年生の生化学実習の様子をご紹介します。
今回は、酵素実習の３回目です。項目は、活性化エネルギーの測定になります。
最初に、班員と操作手順の確認をしたあと進めていきます。
この実習は、温度を変えて酵素反応をさせていきます。
温度によって酵素反応に違いが出ているようです。
この結果をもとに、データをまとめていきます。
少し計算に戸惑いがありましたが、無事に終了しました。
２年生のみなさん、この調子で頑張っていきましょう。
今回は、動物看護コースも同様の実習を行いました。
お二人にピースをもらいました。余裕ですね。
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こんにちは。
動物看護コース２年生は、先日の生化学実習でALP（アルカリ性ホスファターゼ）という酵素の活性を測定しました。
マイクロピペットや試験管ミキサー、恒温槽、吸光度計などの機器を使用し、検体は３重測定で行いました。
機器の操作が確実でないと、数値に大きく影響が出てしまいます。
３本とも目的の数値が出なかった班や１本だけ大きく数値が異なってしまった班などありましたが、各班でその原因を考えることで、操作ミスや測定時の配慮のなさに気づき、それをもとにやり直しをすることで、正確な作業につなげることができました。
ALPの希釈倍率が異なる３本を並べてみました。
濃い色（写真左側）のものから100倍・150倍・200倍希釈です。
希釈倍数が大きいものほど、液色が薄くなってますね。
吸光度から活性値も計算して求めます。
今回、１回で終わった班と６回やり直した班がありました。
６回もやり直すということは反省すべき点ではありますが、多くやり直しただけ、各々の手技のレベルが上がると思います。
よく頑張りました。
今後も同様のことが続くと思いますので、めげずに一緒にやっていきましょう。
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みなさん、こんにちは。
２年生の生化学実習の様子をご紹介します。
今回は、バイオコースは酵素実習の２回目、動物看護コースは初回になります。
班員で相談しながら取り組んでいきました。
最初に予備実験ですね。いい感じに見えます。この結果を踏まえて本実験に入ります。
今回は、最適pHの測定です。酵素反応中です。
酵素反応後です。いい感じに色の濃さに違いがでているようです。
酵素は、pHによって構造が変化し、働き（活性）が悪くなります。
pHごとに酵素活性を測定し、最適なpHを調べます。
今回も、無事に最適pHを調べることができました。
ところで、酵素実習初回の動物看護コースは、こんな感じで、のんびり取り組んでいました。
このピースは、実習が上手くいっている証？ですね。Ａ先生の厳しい視線が気になりますが・・・・・。
次回は、ちょっと余裕がなくなりかも？？？？？
頑張っていきましょう。
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