1年生の検査機器総論で電気泳動を行いました。
今回は、
アガロースゲル電気泳動装置を使用しました。
サンプル溝に試料を5μLアプライしました。
手がぶれないように固定して操作します。
試料は５μLと微量なので確実に取るようにします。
ゲルを突き刺さないように
チップ先端をサンプル溝へ差し込んで、
ゆっくりと試料を排出します。
泳動層を自分のやり易い向きにしてアプライします。
近頃、横向きで操作する学生さんが増えました。
アガロースゲル電気泳動は、
遺伝子を取り扱う実習には欠かせません。
上手にアプライできるように練習しましょう。
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1年生の検査機器総論で、
分光光度計の取り扱い方を行いました。
2年生の生化学実習へお邪魔しました。
ちょうど、分光光度計を使用して酵素活性を測定していました。
2年生から使用方法を教えてもらいます。
横では2年生が旧モデルで測定中。。。
教えてもらったのはNEWモデル
(湘央では(≧▽≦)
質疑応答中です。
いろいろな質問が飛び交っていました。
人に教えることで自分の知識も整理され、
勉強になります。
2年生の方々、
無茶ぶり対応ありがとうございました。
1年生は来年、
教えてあげてくださいね。
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学科ブログ管理者のせいで、
だいぶ前に作成していたのに、
お蔵入りになってしまっていました。
すみません。
沖縄の浦添看護学校で開催された、
合同オープンキャンパスへ参加してきました。
オープンキャンパス前日は豪雨で大変でしたが、
当日は雨も降らず、
たくさん参加者の方がお見えになりました。(全体では約200名程)
応用生物科学科は、
「核の中のスゴイやつ！DNAを見てみよう」を行いました。
バナナをつぶして、バナナのDNAを抽出します。
アルコール沈殿するとDNAが出現し、
皆さんびっくりΣ(ﾟДﾟ)されていました。
今回の参加者の方は、
とても熱心な方が多かったです。
沖縄の方にとって神奈川の気候は少し寒いけれど、
バイオに興味が出たらいいなぁと思いました。
当日は浦添看護の学生さんと、
沖縄在住の卒業生にお手伝いいただき、
とても助かりました。
ありがとうございました。
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湘央学園,バイオテクノロジー,専門学校,バイオ通信,バイオ,実習
みなさん、こんにちは。
今日は、
作製したアーリーレッドとチンゲンサイのプロトプラストを
回収するところからはじめます。
まずは、プロトプラストを含む、
それぞれの酵素反応液をナイロンメッシュで濾過をして、
未反応組織の残渣などを取り除きます。
そして、酵素液を取り除き、
プロトプラストを集めるために、遠心機で遠心します。
遠心した後のアーリーレッドプロトプラストです。
こちらは、チンゲンサイプロトプラストです。
上清を捨てて、酵素を取り除き、
洗浄液を加えてプロトプラストを再浮遊、
さらに遠心します。
アーリレッドとチンゲンサイのプロトプラストを
適度な細胞数になるように洗浄液を加えて調整し、
２種のプロトプラストを混ぜます。
そして、そのプロトプラスト溶液の周囲に融合剤である、
ＰＥＧ（ポリエチレングリコール）を配置します。
そして、倒立顕微鏡で観察しながら、
プロトプラスト溶液とＰＥＧを混ぜると・・・、
赤矢印のように細胞融合が観察できました。
今回の実習では、
植物プロトプラストの細胞融合の様子を観察することが目的ですが、
実際の技術にも通じる経験にもなったことでしょう。
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みなさん、こんにちは。
前回は、アーリーレッドとチンゲンサイの
プロトプラスト作製作業をご覧いただきましたが、
それをもう少し詳しく見ていきましょう。
アーリーレッドの、
プロトプラストができていく様子をご覧いただきます。
最初の方は、このように細胞は細長い形状をしておりますが・・・
酵素反応が進んでいくと、
徐々に細胞と細胞の接着物質が分解されると同時に、
細胞壁が分解されていき、少しずつ丸くなっていきます。
さらに酵素反応が進むと、このようになります。
写真を見ると、
プロトプラストが互いにくっついているように見えますが、
これは振盪しながら酵素反応をしているため、
シャーレの中央にプロトプラストが集まっているからです。
チンゲンサイのプロトプラストも前回ご覧いただきましたが、
少し拡大して見てみましょう。
葉肉細胞なので、
プロトプラストの細胞膜の内側にへばりつくような形で、
緑色の粒のように見える葉緑体を観察することができます。
元気なプロトプラストは、
細胞膜の内側に均一に葉緑体が存在しますが、
元気がなくなってくると、これが不均一に存在するようになります。
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みなさん、こんにちは。
前回は、植物プロトプラスト作製のための酵素液を作りましたが、
今回は、実際にプロトプラストを作製する様子をお届けします。
最初にお断りしておきますが、
今回の実験では、細胞融合の観察を目的としておりますので、
その後の培養を視野に入れておりません。
そのため、無菌的に作業をしていないことを承知の上で、
ご覧ください。
それでは、スタートです。
サンプルとして利用するレッドオニオンは、
ムラサキ色の色素を含む細胞がある部分を取ってきて・・・、
シャーレ内の酵素液につけます。
また、チンゲンサイの葉肉細胞のプロトプラストを得るために、
裏側表皮を剥離して、その葉肉部分を酵素液につけます。
そして、振盪しながら酵素反応をスタート・・・。
変なキャラクターがシャーレの上に乗っておりますが、
気にしないでください。
早くプロトプラストができるように、
おまじないだそうです。
「しゃれ（シャーレ）にならないな。」なんて、
ダジャレは言わないでください。
しばらく酵素反応をしたものを、
倒立顕微鏡で観察すると・・・、
アーリレッドは、このような感じ。
チンゲンサイは、このような感じです。
見づらいかもしれませんが、
一つ一つの丸いものが、プロトプラストです。
次回も、お楽しみに・・・。
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みなさん、こんにちは。
１年生の細胞組織学実習で、
植物プロトプラストを作製しました。
プロトプラストとは、
細胞壁のある細胞から細胞壁を取り除いた細胞（原形質体）をいいます。
細胞壁のある細胞を細胞融合するときには、
細胞壁があると融合できませんので、
あらかじめ細胞壁を取り除いておかなければなりません。
そのため、酵素により細胞壁を分解して、
プロトプラストの状態にするのです。
まずは植物プロトプラストの作製に使う試薬調整から・・・
卒業生をご採用いただいている、
ヤクルト本社製の「マセロザイムＲ－１０」と
「セルラーゼオノヅカＲ－１０」を使用します。
「マセロザイムＲ－１０」は、
植物の細胞と細胞を接着している接着物質を分解して、
細胞を単離する酵素です。
「セルラーゼオノヅカＲ－１０」は、
植物細胞の細胞壁を加水分解する酵素です。
これらを使って、
植物プロトプラストを作製するための酵素液を調整します。
ですがこれらは酵素なので、
その調整にはいくつかの配慮が必要です。
まず第一に氷冷しながら、
調整すること・・・。
氷冷といっても、氷だけで冷やすのではなく、
冷却効率を上げるために、氷水で冷やしましょう。
次に泡立てないように穏やかに撹拌しながら、
調整すること・・・。
酵素の失活を極力防ぐために、重要です。
そして、特別な指示がない限りは、
酵素は最後に入れること・・・。
デリケートな酵素を扱うときには、
やはり扱い方に注意が必要ですね。
そして、酵素液を保存するときには、
調整後すぐに濾過滅菌して、
１回分ずつ分注、冷凍保存しておきます。
ちなみに今回の酵素液は、
細胞単離酵素である「マセロザイムＲ－１０」と、
細胞壁分解酵素である「セルラーゼオノヅカＲ－１０」を
混ぜた酵素液なので、
酵素反応をワンステップで行う一段（階）法で利用する酵素液となります。
一方、第１ステップで細胞単離を単離させ、
第２ステップで細胞壁を分解する二段（階）法という方法もありますが、
この場合には細胞単離酵素と細胞壁分解酵素を別の酵素液として調整する必要があります。
いずれの場合も、
できてくるのは細胞壁の無いプロトプラストなので、破裂しないように、
酵素液にはソルビトールやマンニトールを加えて高張液としておく必要があります。
だいぶお話が長くなってしまいましたので、
続きは次の機会にいたします。
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みなさん、こんにちは。
動物臨床看護学実習の授業の様子をご紹介します。
今回は、１つの事例に対して、
疑われる病気やそれに対する治療法、
改善策などを調べて発表してもらいます。
自分で調べて発表するための資料をまとめました。
前回は２人での作業でしたが、
今回は１人で調べて、
資料を作成し、発表をします。
資料作りや発表のやり方など、
準備を頑張っていました。
作製した資料を見せて発表している様子です。
イラストや写真を使用して分かりやすい発表をしています。
以前に比べて、
作成した資料のクオリティーが上がってきています！
発表者の良かったところをあげてもらい、
発表者にフィードバックしました。
様々な疾患に対する治療法、改善策を自分で調べることで、
知識が身についてきています。
また、パソコン操作や発表スキルも上達してきています。
この調子で３・４期の授業も頑張っていきましょう！
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みなさん、こんにちは。
動物臨床看護学実習の授業の様子をご紹介します。
この授業では、犬種や猫種、
それぞれの動物種でなりやすい病気などについて勉強しています。
また、動物病院で必要な問診票やカルテなどを
自分なりに作成してもらいます。
飼い主様に聞くべきことは何かを自分で考えて、
作成してもらいました。
親しみやすくするために絵を入れたり、
書きやすいデザインにしたりと奮闘していました。
授業の最後には、パワーポイントを使用して、
２人１組で猫種について発表しました。
学生が作成したワードやパワーポイントを、
ファイルにまとめました。
それぞれの個性が活かされたファイルになりました。
パソコンを触る機会があまりないと思うので、
今回の授業で基本的なパソコン操作ができるようになってくれたら、
うれしいです☺
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2年生の細胞工学実習で
細胞培養を始めました。
起こした細胞の倍加時間が20時間なので、
2日に１回お世話をします。
培地、PBS、トリプシンを37℃恒温槽で温めます。
細胞を観察して、
どれくらい細胞が増えているのか判定します。
理想は80％confluent 程度です。
細胞数が少なくても、
一か所に固まって増えているときも継代を行います。
培養フラスコ底面の細胞の割合を5か所以上判定、
平均して全体の細胞数を求めます。
細胞の記録は写真に残します。
ピント合わせが難しいです。
細胞数が決まったら作業開始です。
培地を取り除き、細胞表面をPBSで洗います。
細胞に直接溶液を当ててしまうとはがれてしまうので、
注意しながら溶液を加えます。
トリプシンを加えて、
細胞を培養フラスコ底面から剥がします。
反応後、細胞が剥がれているかどうかは
倒立顕微鏡で観察します。
細胞のふちがキラキラして丸くなってきたらOKです。
培地を加えてトリプシンの反応を止めて、
ピペッティングにより細胞をバラバラにします。
泡立てないように気を付けて行います。
2日後に8割になるように、
2割分の細胞を新しい培地の入った培養フラスコへ移し、
再び培養を開始します。
細胞培養が始まると細胞が中心ですので、
放課後、土曜日などお世話が欠かせません。
大変ですけれど、
ちゃんと行えばちゃんと増えていきます。
手順をしっかり覚えて、
細胞にストレスを与えないように作業していきましょう。
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