みなさん、こんにちは。
新学年が始まりました。
今回は、２年生の生化学実習の様子をご紹介します。
初回の実習は、｢ＤＮＡの分離｣です。
それでは、実習の様子をご覧ください。
初回の実習なので、多めに写真を撮りましたのご紹介します。
まずは、細胞をホモジナイザーで破砕していきます。
破砕後、遠心をしました。
上清を捨てて、沈殿に薬品を入れます。写真ではわかりませんが、少し粘性がでてきます。
これを遠心します。
ＤＮＡは、上清にあるので、上清を回収します。
慎重に慎重に回収をします。あまりに真剣だったので、多く写真を撮ってしまいました。
回収した上清に薬品を入れ、撹拌をします。この実習では一つのポイントになります。
頑張って撹拌しています。
撹拌後、遠心をします。
少し長くなってきましたので、この続きは、バイオ通信｢生化学実習２｣でご紹介します。
よろしければ、バイオ通信｢生化学実習２｣をご覧ください。
分離したＤＮＡは、どんな感じに見えるのかな？
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臨床検査技術学科2年生が、臨床化学実習の中でPCR法の実習を行いました。
1日目は、λファージのDNAを鋳型としてPCRにより3種類のDNA断片を増幅しました。
2日目は、増幅であろうDNA断片をアガロースゲル電気泳動により分離して、増幅の有無を確認しました。
普段はあまり使用しない容量のマイクロピペットの取り扱いに緊張しているようでした。
アガロースゲルへのDNA断片のアプライは各自で行いました。
写真は、学生達のピペット操作の様子です。
みんな、とても真剣な表情でした。
泳動後は染色してUVトランスイルミネーター上でアガロースゲルを観察します。
分子量マーカーも増幅したDNA断片もきれいに観察できました。
左のゲルは増幅したDNA断片がひとつ足りないようです。
何がおこったのか、考察してみましょう♪
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みなさん、こんにちは。
今回の生化学実習は、DNAの性質を利用してDNAの定量分析を行いました。
今回定量したDNAは、もちろん、この生化学実習で最初に行ったDNAの分離で得られたDNAです。
まずは、DNAは、紫外線を吸収しますので、この性質を利用してDNAの確認を行いました。
得られたDNAを確認するために、吸収スペクトルを作成しました。
吸収スペクトルから波長260nm付近に吸収極大波長があるようです。
DNAは、波長260nm付近の紫外線をよく吸収しますので、これでDNAの確認ができました。
DNAの確認だけでは物足りないので、さらにこの吸収スペクトルから
DNAの純度とDNA濃度の推定を行いました。
DNAの濃度は、波長260nmの吸収より計算で求めることができます。
そしてさらに、ジフェニルアミン法でもDNAの定量を行いました。
ジフェニルアミンは、DNAに含まれるデオキシリボースと反応し青色になります。
この青色は、結構キレイな青色です。学生も驚いていました。
今回は、検量線を用いて定量をしますので、写真はDNA標準液の反応です。
色の比較のために並べてみました。
左側が得られたDNA溶液の反応、右側がDNA標準液の反応です。
色の濃さの違いは、DNAの濃度の違いになります。
この溶液を分光光度計で測定して、検量線よりDNAの濃度を求めました。
今回の実習は、少し盛りだくさんの内容になりました。
２年生のみなさん、しっかりレポートにまとめてくださいね。
みなさん、こんにちは。
応用生物科学科２年生の共通科目の生化学実習が始まりました。
動物看護コースの学生には、今までの動物看護系の実習とは違う感覚で取り組んでもらいました。
今回の実習は、DNAの分離です。
いつもなら、実習の様子をご覧いただくのですが、今回は、実習中の様子が全く撮れませんでした。
すみません。ということで、今回は、こんな感じで実習がスタートしました。
先ずは、動物看護コース側のみなさんです。
次はバイオコース側のみなさんです。
まだまだ、カメラ目線はしてくれませんが、このブログで実習の様子をご紹介したいと思います。
実習の方は、両コースとも、無事にDNAを分離できました。
２年生のみなさん、頑張っていきましょう。
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1年生の遺伝子操作学実習でキットを使用してプラスミドを調製しました。
前培養したプラスミド保有菌液をマイクロチューブへ入れてます。
次に微量高速遠心機で遠心して。
集菌します。
プラスミドは細菌の中に存在する染色体DNAとは独立に自己複製能力をもつDNAです。
上清を取り除き、bufferに菌体を再浮遊します。
Lysis Bufferを加えて溶菌させます。Lysis Bufferを加えると溶液は青に変わります。
Neutralization Bufferを加えて、溶液を中和します。
青い色がなくなるまでしっかりと混ぜます。
遠心して上清をカラムへ移します。
カラム中のメンブレンへにDNAを吸着させてから、メンブレンを洗浄・乾燥します。
カラムへTE bufferを加えてDNAを溶出したら出来上がりです。
プラスミドが調製できたら、アガロースゲル電気泳動を行います。
キットを使用するとあっという間に調製できますね。
便利、便利(^^)/
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臨床検査技術学科２年生の実習で、PCR法によるDNA断片の増幅を行いました。
教室で講義の後、115実習室でPCR反応を行いました。
PCR法(Polymerase chain reaction)は二種類のプライマーに挟まれたDNA部分を大量に増幅する方法です。
0.5mLマイクロチューブへ鋳型DNA、二種類のプライマー、dNTP、Taq ポリメラーゼ、反応緩衝液を加えていきます。
普段とは違って少量をはかりとるため、みんな真剣な表情です。
ひとり１サンプル作ります。
入れ忘れがあると反応が起きないので、チェックしながら操作します。
マイクロピペットも普段のメーカーと違うので、I先生に目盛りと使用法を確認してもらいます。
みなさん、楽しそうです。
今回はλファージのDNAを鋳型として使用しています。
増幅出来ますように!(^^)!
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みなさん、こんにちは。
今回の生化学実習は、ＤＮＡの定量を行いました。
今回定量したＤＮＡは、第１回目の生化学実習のときにブタの肝臓から分離したＤＮＡです。
それでは、実習の様子をご覧ください。
こちらは、吸収曲線です。ＤＮＡは、２６０ｎｍ付近に最大吸収波長があります。
今回分離したＤＮＡも最大吸収波長が２６０ｎｍ付近にあることが確認できました。
ＤＮＡの確認ができたところで、余裕のポーズかな？
さらに今回は定量ですので、ジフェニルアミン法で定量を行いました。
今回も無事に実習は終了。
この実習で１期の生化学実習は終了です。
２期からも生化学実習はありますので、２年生のみなさん、しっかり頑張っていきましょう。
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1年生の検査機器総論でアガロースゲル電気泳動を行いました。
アガロースゲル電気泳動はDNAを分離するときによく使われます。
DNA溶液を5μL、サンプル溝へアプライします。
手がぶれないようにしっかりと固定します。
ひとりづつ、サンプルをいれていきます。
アプライの姿勢は、操作しやすい向きで行います。
みんなに見守られながら操作します。
なかなか、いい姿勢で出来ていますね。
電気泳動後、染色したらUVトランスイルミネーター上でアガロースゲルを観察します。
アガロースゲルを突き破ったり、サンプルが漏れたりしないで上手にアプライ出来ていたようです(^^)/
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こんにちは。
応用生物科学科の２年生の生化学実習 第１回目は、ブタの肝臓からのDNAの抽出でした。
長かった春休みを終えて、今年度初の実習・・・
細かい作業工程や精密機器の操作を復習しながら、班で作業を分担・協力しながら和気あいあいと取り組んでいました。
遠心分離した後、上清をとる作業。
駒込ピペットで注意深く集中して採取。
かっこよく決めてるK君
周りも見守ります。
採取後の上清がこちら・・・
とてもきれいにとれました！
かなり省略しますが、全行程を丁寧に確実に行ってくれたため、全班DNAを採取することができました。
このDNAは、また後日の実習で使います。
生化学実習は細かい作業や繰り返しの作業が多く大変ですが、一緒に頑張っていきましょう。
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臨床検査技術学科2年生の臨床化学実習でＰＣＲ法の実習を行いました。
λファージのＤＮＡを三種類のプライマーを使用してサイズの違うＤＮＡ断片を増幅します。
増幅後、アガロースゲル電気泳動により増幅できているのかを確認します。
サンプルをアガロースゲルへアプライします。手がぶれないようにしっかりと固定して行います。
班員に見守られながら。
初めての作業なので緊張気味です。
サンプルは少量(5μL)なので、確実に取ります。
泳動を開始する前に陽極、陰極の向き、電圧を確認してからスタートします。
増幅出来ました(^o^)
細かい作業でしたがみんな上手でした！
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