みなさん、こんにちは。
今回の２年生の生化学実習は、
酵素実習の２回目です。
今回は、酵素の最適pHを調べました。
それでは、実習の様子をご覧ください。
まずは前回から引き続き、
実習計画を作成し、準備を行います。
準備も整い、
いよいよ計画に沿って実行です。
順調に進んでいきます。
酵素反応も順調のようです。
反応液の吸光度を測定し、
pHの変化による酵素への影響を確認していきます。
測定結果をまとめていきます。
結果については、班員と相談です。
こちらは、マイペースチームかな？
集中して取り組んでいるようです。
頑張れ！！！！！
４月も終わりです。
実習の勘も随分戻ってきたようです。
この調子で、さらに技術を磨いていきましょう。
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みなさん、こんにちは。
今回から４回、
２年生の生化学実習では、
酵素の実習が始まります。
初回は、
これから使用する酵素の活性を測定しました。
使用する酵素は、
アルカリ性ホスファターゼという酵素です。
では、実習の様子をご覧ください。
１年生のときに化学実習で
酵素の活性測定をしていますが、
そのときは測定だけでした。
今回は、酵素を使用していきますので、
今後の実習計画から考えていただきました。
試薬の調製をしつつ、
班員と相談して計画を立てていきます。
なかなか上手く計画が立たず、
お悩み中もありましたが、
今回の活性測定がスタートしました。
酵素反応中です。
酵素の濃度の違いにより、
黄色の濃さが異なります。
酵素反応を停止後、
吸光度を測定します。
吸光度を測定中。
計画通り、
順調に進んでいるようです。
余裕のポーズ？
春休みの影響か、
まだまだ実験の勘が鈍っているようですが、
さすが２年生。
少し早めに終了しました。
今回の測定結果をもとに
次回からの実習は進んでいきますので、
しっかり頑張っていきましょう。
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2年生の遺伝子工学実習で
「ゲルからのDNA断片の回収」を行いました。
アガロースゲル電気泳動を行います。
サンプルは
制限酵素で切断した
プラスミドDNAです。
サンプルのアプライは慎重に。
手がぶれないように固定します。
電気泳動後に目的のバンドを
ゲルバンドカッターで切り取ります。
本番前に練習してから。
アガロースゲルを染色後、
トランスイルミネーター上にのせます。
紫外線を当てながら
目的のバンドを切り取ります。
切り取ったゲルは、
穴の開いた0.5mLマイクロチューブへ入れます。
それを1.5mLマイクロチューブへ入れて
遠心します。
ゲルが穴を通ってバラバラになり、
下の1.5mLマイクロチューブに集まります。
バラバラにしたゲルに
平衡化中性フェノールを加えて
よく混合させます。
－80℃で凍結して
ゲルマトリックス内部の水分を凍らせて
ゲルの構造を破壊します。
DNAはゲルマトリックスの間の水分子の間にあって、
中性条件ではフェノールよりも水によく溶けるので
凍ったゲルを室温で溶解すると、
水と一緒にゲルから外に出てきます。
水に溶けているDNAはアルコール沈殿を行い、
DNA沈殿させて得ることができます。
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1年生のバイオサイエンス実習で、
試薬調製を行いました。
粉末試薬からの試薬調製と、
液体試薬からの試薬調製です。
take先生のデモンストレーションから。
粉末試薬は電子天秤を使用して、
必要量はかり取ります。
水平合わせしてから秤量します。
take先生チェック入ります。
必要量になるまで
慎重にはかり取ります。
取りすぎても
元の試薬瓶には戻さないようにします。
三角フラスコへ
少量の蒸留水を入れます。
はかり取った粉末試薬を入れて攪拌し、
試薬を溶解します。
手動で攪拌するときは
三角フラスコの底へ手を添えます。
完全に溶解したら
メスシリンダーへ溶液を移して、
蒸留水を全量になるまで加え
メスアップします。
液体試薬の場合は
メスシリンダーで必要量をはかり取ります。
ビーカーに取り分けてはかると
やり易いです。
全量まで蒸留水を加えて
メスアップします。
目線を下げて
メニスカスを合わせます。
どちらの試薬も
メスアップ後には三角フラスコへ移し
攪拌したら出来上がりです。
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みなさん、こんにちは。
4月24日に、
2学年全学科合同の学外オリエンテーションを行いました。
神奈川県にある、
｢さがみ湖リゾート プレジャーフォレスト｣に行きました。
バスで移動しました♪
あいにく天気は雨でしたが、
1年ぶりのオリエンテーションに大興奮な様子・・・。
出発してから到着するまで、
終始大騒ぎしていました笑
到着後はスタンプラリーに挑戦します！
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1年生の検査機器総論で、
顕微鏡の取り扱いを行いました。
始めに顕微鏡の基礎知識を、
O理化のY様から講義をしていただきました。
毎年、顕微鏡メンテナンスもお願いしています。
標本を観察しながら、
生物顕微鏡の取り扱いに慣れていきます。
眼幅調整、視度調整、
光量調整、観察する時の姿勢・・・、
いろいろと調整することがありますね。
これからは実体顕微鏡、
倒立顕微鏡も使用していきます。
素早くピントが合わせられるようになってくださいね(≧▽≦)
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1年生の検査機器総論で、
秤量装置と攪拌装置の取り扱い方を行いました。
実習が本格的になると、
始めに試薬調製をします。
粉末の試薬をはかるときには、
電子上皿天秤を用います。
天秤は水平なところに置いていないと、
正確な重さがはかれません。
天秤の足を調節して水平を取ります。
天秤には水平器が付いているので、
それを利用して水平をとります。
少し苦労しているようです。
うまくできないときは振り出しに戻って。
足を全て下げてからやり直す事をおすすめします。
粉末試薬は薬さじを用いてはかり取ります。
溶質がはかれたら、
溶媒に溶解します。
こちらが溶液を混ぜる機器、
マグネチックスターラーです。
渦の中に指を入れてみました!(^^)!
こちらは試験管の中の溶液を攪拌する、
試験管ミキサーです。
試験管をしっかりと持って。
溶液が渦を巻くように、
試験管の先端を試験管ミキサーへ押し当てます。
使用後は汚れを拭いて後片付けします。
これからよく使用する機器です。
キレイに使ってくださいね🎶
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みなさん、こんにちは。
今回の生化学実習はRNAの分離です。
まだ始まって２週目に入ったばかりですで、
春休み気分が抜けていないようです・・・。
長い撹拌時間では、
こんな感じですが、しっかり取り組んでいます。
それでは、今回の実習の流れをご紹介します。
RNAは細胞の中にありますので、
まずは細胞を壊し、遠心をします。
上清（赤い溶液の部分）をとり、
タンパク変性剤を加えて、撹拌します。
撹拌後、しばらく放置すると、層に分かれてきます。
これを遠心すると、３層に分離します。
ちょっとわかりづらいですが、
一番上に少し濁った白い上清、
真ん中に白い層（タンパク質が変性したもの）、
一番下に有機溶剤（タンパク質変性剤）の層ができます。
一番上の層（少し濁った白い液）に
アルコールを加えると、沈殿が生じてきます。
しばらく放置すると、沈殿が沈んできます。
これを遠心します。
遠心管の材質が白いので、
かなりわかりづらいですが、
遠心管の底に沈殿があります。
ちょっと濃い白色になってます。
この沈殿が、RNAになります。
最後にRNAを回収して乾燥して保存しました。
久しぶりの実習なので、
１回目（DNAの分離）、
２回目（RNAの分離）で肩慣らしをしていただきました。
来週から、酵素の実習になります。
２年生のみなさん、
マイクロピペットの操作になりますので、
しっかり取り組んでいきましょう。
～おまけ～
うっかりでしたが、
しっかりリカバリーしました。
さすが２年生ですね。
うっかり部分はご想像にお任せします。
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1年生の検査機器総論では、
実習で使用する機器や器具の取り扱い方を学びます。
今回はマイクロピペットの取り扱いを行いました。
生化学、遺伝子、微生物学、細胞工学など、
バイオ技術を学ぶ上でいろいろな場面で使用する機器です。
0.5~1000μLの範囲の液体の体積がはかり取れます。
先端に使い捨てのチップを取り付けて使用します。
今回は青色溶液をはかります。
はかった溶液はパラフィルムの上に載せます。
たくさんはかりましたね。
同じ容量だったら、
だいたい同じくらいの大きさの玉が出来ます。
今回は最大150μL(0.15mL)の容量をはかりました。
プッシュボタンの1段目と2段目が、
区別できるようにしておきましょう。
真剣に練習に取り組んでいました。
いつの間にかいろいろな作品が出来上がりました。
プッシュボタンを上下するだけですが、
きちんと使用しないと正確には、はかれません。
基本に忠実に操作することが上達の近道です。
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1年生のバイオサイエンス実習が始まりました。
白衣が、初実習に間に合いました。
今回は、器具の洗浄法を行いました。
器具の洗浄は、
これから行っていく実習には欠かせない技術です。
器具ごとに洗うポイントが違います。
何種類かの器具を洗浄してみました。
試験管ブラシで、しっかりと洗浄します。
洗剤が残らないように十分に流水ですすぎ、
最後は蒸留水をかけて乾燥します。
効率よく、
キレイに洗浄できるように練習していきましょう。
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